banner

Блог

May 31, 2023

Электрохимическое обнаружение мочевой кислоты в неразбавленной человеческой слюне с использованием интегрированных электродов из уриказной бумаги.

Том 12 научных отчетов, номер статьи: 12033 (2022) Цитировать эту статью

1848 доступов

3 цитаты

1 Альтметрика

Подробности о метриках

В этом исследовании мы представляем интегрированный электрохимический датчик на бумаге с иммобилизованной уриказой (UOx-бумага) для обнаружения мочевой кислоты (МК) в слюне. UOx иммобилизовали в зоне обнаружения на бумажной подложке с вощеным рисунком. Эта бумага UOx была объединена с модифицированным берлинской лазурью угольным электродом с трафаретной печатью после электрополимеризации о-фенилендиамина для создания электрохимической ячейки для образцов небольшого объема (20 мкл). Во-первых, мы оптимизировали условия изготовления UOx-бумаги. Затем амперометрический отклик электрохимического датчика УК на основе бумаги UOx анализировали с использованием известной концентрации стандартного раствора МК в искусственной слюне при приложенном потенциале - 0,1 В (по сравнению с Ag-псевдоэлектродом сравнения). Электрохимический датчик UA на основе бумаги UOx показал чувствительность 4,9 мкА·мМ-1 в линейном диапазоне от 50 до 1000 мкМ (R2 = 0,998), высокую селективность и хорошую воспроизводимость, а также предел обнаружения 18,7 мкМ ( 0,31 мг/дл) UA. Наконец, мы количественно оценили уровни МК в неразбавленных образцах слюны здоровых людей (n = 20) и пациентов с подагрой (n = 8). Уровни коррелировали с уровнями, измеренными с помощью обычных ферментных анализов МК в слюне, а также с уровнями МК в сыворотке. Электрохимический датчик МК на основе бумаги UOx представляет собой удобный и удобный инструмент для оценки уровня МК в слюне.

Мочевая кислота (МК), конечный продукт пуринового обмена в организме человека, играет важную роль при различных физиологических и патологических состояниях, включая подагру1,2,3. УК является антиоксидантом, и, как сообщается, гипоурикемия связана с иммуноопосредованными или дегенеративными неврологическими заболеваниями, такими как рассеянный склероз, болезнь Паркинсона или болезнь Альцгеймера3. Рецидивирующий афтозный стоматит и плоский лишай полости рта также были связаны с низким уровнем UA4,5 в слюне. Однако гиперурикемия способствует развитию и прогрессированию подагры, метаболического синдрома, хронической болезни почек или сердечно-сосудистых заболеваний3. Хотя гиперурикемия не всегда вызывает подагру и диагноз подагры не основывается только на гиперурикемии, подагра развивается у пациентов с гиперурикемией, что приводит к отложению кристаллов мононатрия урата в тканях. Недавние рекомендации по лечению подагры рекомендуют оптимизировать уратснижающую терапию для достижения и поддержания уровня МК в сыворотке < 5–6 мг/дл, но не < 3 мг/дл6,7. Таким образом, мониторинг уровня МК в сыворотке крови необходим для диагностики, лечения и наблюдения за гиперурикемией и подагрой. Однако венопунтура является инвазивной процедурой и может вызвать осложнения, включая травмы и кровотечения. Кроме того, анализ сывороточной МК требует лабораторных условий с использованием специального оборудования.

Диагностика слюны привлекает повышенное внимание в областях, где используется тестирование на месте оказания медицинской помощи (POCT), а также в клинических приложениях для частого и простого мониторинга заболеваний, а также для прогнозирования результатов после лечения, поскольку слюна отражает физиологический и патологический статус организма8. ,9. УК в основном вырабатывается в печени и кишечнике. Большая часть МК выводится через почки и кишечник через транспортеры уратов. Однако переносчики органических анионов и уратов также экспрессируются в слюнных железах10. Кроме того, в нескольких клинических исследованиях в большинстве случаев сообщалось о линейной зависимости между уровнями МК в сыворотке и слюне, что указывает на потенциал определения МК в слюне в качестве альтернативы анализам крови1,2,11,12. Для обнаружения МК в слюне были разработаны различные аналитические методы, включая высокоэффективную жидкостную хроматографию (ВЭЖХ)13, капиллярный электрофорез (КЭ)14 и наборы для ферментативного колориметрического анализа15,16,17,18. Однако они не подходят для ежедневного личного использования, поскольку обычно отнимают много времени и требуют дорогостоящих инструментов и специалистов. Хотя некоторые коммерчески доступные наборы для ферментативного анализа можно использовать для различных типов биологических матриц, таких как слюна, сыворотка и моча2, на них могут влиять другие факторы, такие как витамин С, липиды или эндогенная пероксидаза, которые присутствуют в биологических образцах и в конечном итоге вызывать ложные результаты2,19,20,21,22. Кроме того, у них короткий срок годности, поскольку пероксидаза, содержащаяся в реагентах, несовместима с консервантами, такими как азид натрия23. В результате просроченный реагент может привести к снижению их чувствительности2,24.

 + 0.65 V) to measure the hydrogen peroxide (H2O2) product, it is subject to various electroactive interferences. PrB or ferric hexacyanoferrate has been referred to as an "artificial peroxidase", because it can enhance electron transport and catalyze the reduction of H2O2 at low overpotential30,31. Therefore, PrB-SPCE provides selective cathodic detection of H2O2 produced by the enzymatic reaction of UA. However, the PrB may decompose in neutral or weakly alkaline solutions32. Besides, saliva is a complex and difficult matrix to manage due to its high viscosity and protein assembly, as well as other electroactive species33. To improve the stability, selectivity and biocompatibility of PrB-SPCE, we introduced an external protective polymer membrane such as PPD on PrB-SPCE via electropolymerization. PPD membrane is known for its ability to penetrate low-molecular-weight compounds such as H2O2 and reject other electroactive species such as AA and AP, as well as prevent biofouling on the electrode28,34. To characterize the electrocatalytic property of PPD/ PrB-SPCE toward H2O2, we performed cyclic voltammetry measurements in artificial saliva with and without 1 mM H2O2 in the potential range of − 0.20 to + 0.40 V (vs. Ag pseudo-reference electrode) at a scan rate of 50 mV/sec. As shown in Fig. 2a, the PPD/PrB-SPCE exhibited the characteristic Prussian White (PrW)/PrB redox activity (0.02/0.13 V) in the artificial saliva solution. The cathodic peak current increased to − 12.3 μA at − 0.00 V in 1 mM H2O2 solution. To confirm the electrochemical performance of PPD/PrB-SPCE toward H2O2, the CA technique was used at an applied potential of − 0.1 V (vs. Ag pseudo-reference electrode). The selectivity of PPD/PrB-SPCE was confirmed by the current response of H2O2 in the presence of physiological levels of the relevant electroactive constituents of saliva including UA, AA, and AP. As shown in Fig. 2b and 2c, the interference currents due to UA (1000 μM), AA (500 μM), and AP (500 μM) were negligible, compared with the strong response due to H2O2 (50, 100, and 200 μM). In particular, the current responses of AA (− 0.12 ± 0.02 μA, [mean ± standard deviation]) and AP (− 0.06 ± 0.002 μA) on PPD/PrB-SPCE were significantly lower than those on PrB-SPCE (− 0.17 ± 0.01 μA for AA and − 0.14 ± 0.01 μA for AP, respectively). However, the cathodic current of H2O2 (− 0.35 μA ± 0.01 μA) on PPD/PrB-SPCE and PrB-SPCE (− 0.38 ± 0.01 μA) was similar. This result indicates that PPD/PrB-SPCE has high selectivity for the detection of H2O2 without any interference effect by possible electroactive species in saliva. In addition, the external PPD membrane did not inhibit the permeability of H2O2 toward PrB-SPCE./p>

ДЕЛИТЬСЯ